中华人民共和国国家标准
食品安全国家标准
(征求意见稿)
xxxx-xx-xx发布xxxx-xx-xx实施
食品安全国家标准
食品微生物学检验创伤弧菌检验
1范围
本标准规定了水产品中创伤弧菌（Vibrio vulnificus）的检验方法。
本标准适用于鱼、虾、蟹、贝类等水产品中创伤弧菌的检验。
2 设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：
冷焊钳2.1 恒温培养箱：36℃±1℃。
2.2 冰箱：2℃～5℃、7℃～10℃。
2.3 恒温水浴锅。
2.5 天平：感量0.1 g
2.6 PCR仪。
2.7 电泳仪或毛细管电泳仪。
2.8 凝胶电泳成像系统或紫外检测仪。
虚拟架子鼓
2.9 生物安全柜。
2.10 高速离心机（最大转速至少15 000 r/min）。
2.11 涡旋振荡器。
2.12 微量可调移液器（量程2.5 µL、10 µL、100 µL、1000 µL）及配套吸头。
2.13 pH试纸或pH计。
2.14 无菌试管：规格18 mm×180 mm和15 mm×100 mm。
2.15 无菌吸管：规格1 mL（具0.01 mL刻度）和10 mL（具0.1 mL刻度）。
2.16 无菌锥形瓶：容量250 mL、500 mL和1000 mL。
2.17 无菌培养皿：直径90 mm。
2.18 无菌手术剪、镊子、钳子等。
2.19 PCR 反应管。
3 培养基和试剂
3.1 蛋白胨-氯化钠-纤维二糖-多粘菌素E（PNCC）增菌液：见附录A中A.1。
3.2 纤维二糖-多粘菌素E（CC）琼脂：见附录A中A.2。
3.3 改良纤维二糖-多粘菌素-多粘菌素E（mCPC）琼脂：见附录A中A.3。3.4 3%氯化钠胰蛋白胨大豆琼脂：见附录A中A.4。
3.5 磷酸盐缓冲液（PBS）：见附录A中A.5。
3.6 3%氯化钠三糖铁琼脂：见附录A中A.6。
3.7 嗜盐性试验培养基：见附录A中A.7。
3.8 3%氯化钠赖氨酸脱羧酶试验培养基：见附录A中A.8。全自动真石漆生产设备
3.9 3%氯化钠MR-VP培养基：见附录A中A.9。
3.10 3%氯化钠溶液：见附录A中A.10。
3.11 氧化酶试剂：见附录A中A.11。
3.12 革兰氏染液：见附录A中A.12。
3.13 邻硝基酚-β-D-半乳糖苷（ONPG）试剂：见附录A中A.13。
3.14 V oges-Proskauer（V-P）试剂：见附录A中A.14。
3.15 细菌DNA提取试剂盒。
3.16 生化鉴定试剂盒。
3.17 PCR反应配套试剂。
3.18 琼脂糖凝胶电泳配套试剂。
3.19 具有菌种保藏资质单位提供的创伤弧菌标准菌株。
4 检验程序
创伤弧菌检验程序见图1。
图1创伤弧菌检验程序
5 操作步骤
5.1.1 新鲜样品采集后应于3 h内完成检验，若不能立即检验，则将样品置于7℃～10℃冰箱（因创伤弧菌在4℃条件下极易形成活而不可培养的状态，因此样品勿放4℃）保存，并尽可能在24 h内完成检验；冷冻样品应在不超过45℃的温热条件下解冻不超过15 min。
5.1.2 取样
鱼类和头足类取其表面组织、肠和鳃，贝类则取全部内容物（包括贝肉和体液）。甲壳
类取整个动物或其中心部分（包括肠和鳃）。如为带壳贝类或硬壳甲壳类，则应先用流动自
来水冲洗外壳并用滤纸吸干表面水分，然后无菌操作打开外壳，按上述要求取相应部分。
5.1.3 以无菌操作取经上述处理后的样品不少于25 g，用旋转刀片式均质器8000 r/min～10000 r/min均质1 min，或用拍击式均质器均质1 min～2 min后，取25 g样品匀浆液置于均质袋中，加入PNCC增菌液225 mL，充分混匀制备成1:10的样品匀液。如无均质器，则
将样品放入无菌乳钵中充分研磨，取磨碎后的样品25 g转入500 mL无菌锥形瓶中，加入
PNCC增菌液225 mL，充分振荡混匀，制备成1:10的样品匀液。
5.2 增菌
将5.1.3制备的1:10样品匀液于36 ℃±1 ℃培养18 h±1 h。
5.3 PCR 初筛
PCR实验环境条件和过程控制应参照GB/T 27403 《实验室质量控制规范食品分子生物学检测》规定执行，下同。
5.3.1 DNA 模板的制备
吸取1mL PNCC增菌液于1.5 mL EP管中，9000 r/min离心3 min，弃去上清液。向沉
淀中加入1mL PBS将其悬浮并充分清洗后，9000 r/min离心3 min，弃去上清液，按此步骤
反复清洗沉淀2-3次，弃去最后一遍上清液，加入1 mL 无菌超纯水，100℃煮沸10 min，
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继而12 000 r/min离心5 min，上清液用于PCR分析。若不能及时分析则于-20℃保存备用。
也可以用商品化的DNA提取试剂盒按其说明书要求提取制备DNA模板。
5.3.2 PCR扩增
（1）引物
信息见表1。
表1. 创伤弧菌PCR检测用引物信息
引物序列扩增片段长度vvhA-785F 5' ccg cgg tac agg ttg gcg ca 3'
519 bp vvhA-1303R 5' cgc cac cca ctt tcg ggc c 3'
（2）对照设置
每次PCR反应使用创伤弧菌标准菌株作为阳性对照，同时，使用除创伤弧菌之外的其
他革兰氏阴性菌标准菌株作为阴性对照，以灭菌去离子水作为空白对照。
（3）PCR反应体系
见表2。
表2. 创伤弧菌PCR检测反应体系组成
试剂反应体积（μL）
无菌超纯水13.7
太阳能恒温器10×PCR缓冲液 2.5
25 mmol/L MgCl2 2.5
2.5 mmol/L dNTP 2.0
上游引物（10μM） 1.0
上游引物（10μM） 1.0
调度主机DNA模板 2.0
5 U/μL Taq 酶0.3
总体积25.0
（4）PCR 反应程序
预变性：94℃、5 min；变性：94℃、1 min，退火：62℃、1 min，延伸：72℃、1 min；循环数：30；终延伸：72℃，10 min；电泳检测。若不能立即检测则4℃保存备用。
5.3.3 电泳
凝胶电泳检测PCR扩增产物。用0.5×TBE缓冲液配制1.5%的琼脂糖凝胶（含EB 0.5 μg /mL或Goldview 5 μL /100 mL），取5 μL PCR扩增产物与1 μL 6×核酸电泳上样缓冲液混合后，点样，同时有一孔加入DNA分子量标准。根据以下公式：电泳槽正负极的距离（cm）×5 V/cm计算并设置电压，使用0.5×TBE缓冲液恒压电泳，根据溴酚蓝的移动位置确定电泳时间，使用凝胶成像系统或紫外检测仪观察和记录结果。
也可采用毛细管电泳仪进行PCR扩增产物的检测。
5.3.4 结果判定
质控系统：阴性对照和空白对照均未出现扩增条带，阳性对照出现预期大小（519 bp）的扩增条带，则检测系统正常。否则，任一种对照如果出现非上述正常结果，应重做实验，同时排除污染因素。
阳性结果：在质控系统正常的情况下，待测样品出现预期大小（519 bp）的扩增条带，判定PCR结果为阳性。
阴性结果：在质控系统正常的情况下，待测样品未出现预期大小（519 bp）的扩增条带，判定PCR结果为阴性。
5.4 分离
用10 μL接种环在距离PNCC增菌液的液面下1 cm沾取一环增菌液，分别划线接种于CC和mCPC平板，于36 ℃±1℃条件下培养18 h±1 h。典型的创伤弧菌在CC和mCPC平板上的形态为：圆形、扁平，光照下透明或中心不透明但边缘透明的黄至橘黄菌落，菌落直径1mm～2 mm，菌落周围可出现（或不出现）黄晕圈。 5.5 分纯培养
从CC平板和mCPC平板上各挑取至少5个创伤弧菌可疑菌落（少于5个时全选），分别接种于3%氯化钠胰蛋白胨大豆琼脂平板，36℃±1 ℃培养18 h±1 h后用于后续鉴定。创伤弧菌在3%氯化钠胰蛋白胨大豆琼脂平板上的菌落形态为圆形，乳白，湿润，隆起，直径1mm～2 mm。
5.6 鉴定
创伤弧菌的鉴定可采用菌落特征结合生化特性、PCR方法中的其中之一进行。
5.6.1菌落特征及生化特性
5.6.1.1初步鉴定
该步骤用于创伤弧菌的初步鉴定，进行以下四项鉴定实验时，挑取的菌落应来自分纯后的同一个单菌落，其中任一项鉴定为阴性者无需进行后续确证试验。
革兰氏染镜检：从5.5中3%氯化钠胰蛋白胨大豆琼脂平板上挑取创伤弧菌疑似菌落进行革兰氏染并镜检。创伤弧菌为革兰氏阴性，显微镜下菌体为棒状、弧状、卵圆状等多形态，无芽胞。
氧化酶试验：用接种环从5.5中3%氯化钠胰蛋白胨大豆琼脂平板上挑取创伤弧菌疑似
